線粒體膜電位熒光探針是一種廣泛用于檢測線粒體膜電△Ψm位的理想熒光探針。染料以電勢依賴性的方式積聚在線粒體內(nèi)，可以用來檢測細胞、組織或純化的線粒體膜電位。正常線粒體內(nèi)，聚集在線粒體基質(zhì)中形成聚合物，聚合物發(fā)出強烈的紅色熒光(Ex=585 nm, Em=590 nm)；不健康的線粒體由于膜電位的下降或喪失，只能以單體的形式存在于胞漿中，產(chǎn)生綠色熒光(Ex=514 nm, Em=529 nm)。不僅可用于定性檢測，因顏色的變化可以非常直接的反映出線粒體膜電位的變化。也可以用于定量檢測，因線粒體的去極化程度可以通過紅/綠熒光強度的比例來衡量。觀察時，只需使用常規(guī)的觀察紅色熒光和綠色熒光的設置即可。
線粒體膜電位的下降是細胞凋亡早期的一個標志性事件。通過線粒體膜電位熒光探針從紅色熒光到綠色熒光的轉(zhuǎn)變可以很容易地檢測到細胞膜電位的下降，同時也可以用它從紅色熒光到綠色熒光的轉(zhuǎn)變作為細胞凋亡早期的一個檢測指標。
線粒體膜電位熒光探針使用方法：
1. 工作液配制：
1)粉末(5 mg)：直接加1 mL DMSO到粉末內(nèi)，室溫顛倒混勻使其充分溶解，即得到5 mg/mL的儲存液。溶液分裝成小量儲存于-20℃，避光干燥，避免反復凍融。
2)儲存液(1 mg in DMSO)：本品是JC-1的DMSO儲存液，濃度為5 mg/mL。使用者需要根據(jù)單次用量來分裝，-20℃避光干燥，避免反復凍融。
3)工作液配制：將凍存的儲存液置于室溫充分融化，之后用緩沖液或者預熱的培養(yǎng)基直接稀釋儲存液(5 mg/mL)到需要的工作液濃度，邊震蕩邊稀釋，充分混勻。為了去除任何不溶顆粒，建議13,000 x g離心JC-1工作液1 min，小心吸取上清轉(zhuǎn)移到新的管子內(nèi)。整個過程要避光操作。注意：因JC-1不溶于水，很可能在稀釋到工作液的過程中形成聚集顆粒，則建議細胞染色前用離心或者過濾的方法去除這些顆粒后再使用。
2. 染色步驟(流式細胞儀)
1)于6-，12或24-孔板上進行細胞鋪板，密度為5×105 cells/mL。37℃，5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)過夜。選擇合適的化合物根據(jù)特定的步驟進行凋亡誘導。 注：進行凋亡誘導時的細胞密度建議不超過1×106 cells/mL，也可根據(jù)自己的細胞類型培養(yǎng)至合適的密度。
2)取0.5 mL細胞懸液至無菌的離心管內(nèi)；
3)室溫條件400 x g離心5 min；吸掉上清。
4)用0.5 mL JC-1工作液重懸細胞，于37℃，5%CO2培養(yǎng)箱孵育15-30 min；注意：一般情況，15 min足以進行充分的染色。
5)室溫條件400 x g離心5 min；吸掉上清；
6)用2 mL細胞培養(yǎng)液或者緩沖液重懸細胞，之后室溫條件400 x g離心5 min；吸掉上清；
7)重復步驟6)；
8)用0.5 mL新鮮培養(yǎng)液或者緩沖液重懸細胞，即可進行后續(xù)的流式分析。注意：請馬上進行流式定量分析，此細節(jié)很重要。
數(shù)據(jù)分析：含有紅色JC-1聚集物的健康細胞線粒體用FL2通道檢測；含有綠色JC-1單體的凋亡或不健康細胞用FL1(FITC)通道檢測。
3. 染色步驟(熒光顯微鏡)
A.懸浮細胞
1)-6)同上JC-1染色步驟(流式細胞儀)；
7)用0.3 mL的緩沖液重懸細胞，即可進行熒光顯微鏡檢測。注意：請馬上進行熒光顯微分析，此細節(jié)重要。
B.貼壁細胞
1)培養(yǎng)皿內(nèi)用蓋玻片進行細胞爬片或者細胞培養(yǎng)在腔室玻片(chamber slide)上。選擇合適的化合物根據(jù)特定的步驟進行凋亡誘導。
2)染色前開始配制工作液，配制步驟見上。
3)吸掉細胞培養(yǎng)液，然后加入足夠覆蓋所有細胞的工作液。于37℃，5%CO2培養(yǎng)箱孵育15-30 min；注意：一般情況，15 min足以進行充分的染色。
4)吸掉培養(yǎng)液，然后用合適的緩沖液來清洗細胞2次。
5)加入2 mL細胞培養(yǎng)液(培養(yǎng)液可含有血清和酚紅)或者PBS緩沖液，于熒光顯微鏡或者共聚焦顯微鏡下觀察。數(shù)據(jù)分析同A. 懸浮細胞。
注意事項：
1)線粒體膜電位熒光探針是光敏感性的，所有染色步驟的操作過程中避免強光接觸。
2)染色完成后，立即進行后續(xù)的結果分析非常必要；
3)為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。
4)本產(chǎn)品僅供科研使用。請勿用于醫(yī)藥、臨床診斷或治療，食品及化妝品等用途。請勿存放于普通住宅區(qū)。
